Perfiles genéticos de los parásitos Schistosoma haematobium de las zonas críticas de transmisión de Malí
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Perfiles genéticos de los parásitos Schistosoma haematobium de las zonas críticas de transmisión de Malí

Dec 22, 2023

Parásitos y vectores volumen 16, número de artículo: 263 (2023) Citar este artículo

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Aunque la esquistosomiasis es un problema de salud pública en Malí, se sabe poco sobre el perfil genético del parásito. El propósito de este estudio fue analizar el perfil genético de los esquistosomas del grupo Schistosoma haematobium en niños en edad escolar en varios sitios de Mali.

Se recolectaron muestras de orina del 7 al 21 de noviembre de 2021 y se sometieron a un método de filtración para detectar la presencia de huevos de S. haematobium. El estudio se llevó a cabo en dos pueblos endémicos de esquistosomiasis (Fangouné Bamanan y Diakalèl), calificados como puntos críticos según la definición de la Organización Mundial de la Salud (OMS). Se utilizó el genotipado molecular tanto en Cox1 como en ITS2/18S para la asignación taxonómica de los huevos.

Se recolectaron individualmente un total de 970 miracidios de 63 niños en edad escolar y se almacenaron en tarjetas Whatman FTA para análisis molecular. Después de la genotipificación, el 42,0% (353/840) y el 58,0% (487/840) de los miracidios revelaron perfiles de Schistosoma bovis y S. haematobium Cox1, respectivamente; 95,7 (885/925) y 4,3% (40/925) revelaron S. haematobium y S. haematobium/S. Perfiles de curassoni para genes ITS/18S, respectivamente. Hubo una diferencia significativa en la distribución del perfil Cox1 e ITS2/18S según la aldea (P <0,0001). En total, el 45,6% (360/789) eran híbridos, de los cuales el 72,0% (322/447) eran de Diakalèl. Se identificaron tres perfiles híbridos (Sb/Sc_ShxSc con 2,3%; Sb/Sc_ShxSh con 40,5%; Sh_ShxSc con 2,8%) y un perfil puro (Sh_ShxSh con 54,4%).

Nuestros hallazgos muestran, por primera vez hasta donde sabemos, una alta prevalencia de esquistosomas híbridos en Malí. Se necesitan más estudios sobre la genética de poblaciones de esquistosomas en la interfaz entre humanos y animales para evaluar el flujo genético del parásito y sus consecuencias en la epidemiología de la enfermedad, así como en la transmisión a los humanos.

La esquistosomiasis es una enfermedad parasitaria de importancia médica y veterinaria que afecta principalmente a zonas tropicales y subtropicales. Según la OMS [37], la esquistosomiasis afecta a casi 240 millones de personas en todo el mundo, el 85% de ellas vive en África y > 700 millones de personas viven en zonas endémicas. En Malí, las prevalencias nacionales de infección estimadas en 2004-2006 fueron del 38,3% y del 6,7% para Schistosoma haematobium (Sh) y S. mansoni (Sm), respectivamente [10]. Mientras que la alta prevalencia de Sh está generalizada en todas las regiones de Malí, las infecciones por Sm se limitan principalmente a pequeños grupos en el centro del país (distritos de Macina y Niono en la zona de riego de Office du Niger) y en Baguineda, a 30 km de Bamako [8, 10]. , 33]. Además de los huéspedes vertebrados humanos, algunas especies de Schistosoma también pueden afectar al ganado. En total, se estima que aproximadamente 165 millones de animales parasitados en todo el mundo padecen enteritis hemorrágica, anemia y caquexia, y la mayoría de las veces mueren [12]. En África, tres especies de Schistosoma están involucradas en la infestación del ganado: S. bovis (Sb), S. mattheei (Sma) y S. curassoni (Sc) [23]. (Sb) es el esquistosoma animal más estudiado. Sb se informó por primera vez en Mali en 1988 en el delta central del Níger, donde la prevalencia en animales es de hasta el 80% [31]. Dos años más tarde, se informaron prevalencias del 62,5% y del 85,1% para Sb y Sc en los mataderos de las ciudades de Bamako y Mopti [26]. Más allá de estos casos notificados en Mali, la Sb ocurre en la zona mediterránea y en toda África subsahariana, especialmente en África occidental donde se ha reportado en casi todos los países (Burkina Faso, Gambia, Ghana, Guinea, Bissau-Guinea, Mauritania, Níger , Nigeria, Senegal, Malí, Costa de Marfil y Togo) [17, 21].

La hibridación es un fenómeno biológico que corresponde al encuentro y cruce entre dos entidades genéticas distintas previamente definidas como especies diferentes [15, 20]. La hibridación puede representar una preocupación real en términos de transmisión de parásitos, epidemiología y morbilidad. La hibridación en parásitos puede complicar la prevención, el control efectivo y el tratamiento de la enfermedad [3] porque las formas híbridas a veces exhiben mayor virulencia y/o resistencia a los tratamientos en comparación con sus especies progenitoras [16, 30]. El estudio de la hibridación ha recibido un interés renovado desde el uso generalizado de herramientas moleculares en la identificación de parásitos. Curiosamente, se han encontrado huevos con forma típica (Sb) en heces humanas [25], pero hasta la fecha no hay herramientas moleculares disponibles para determinar el estado híbrido de estos huevos. Hoy en día, ya se han identificado hibridaciones naturales entre esquistosomas, incluso entre diferentes especies de esquistosomas que infectan animales, como los cruces de SbxSc en Senegal y Mali [26, 34], entre especies de esquistosomas que infectan humanos y animales, como los cruces de ShxSb en varios países de África occidental [ 2, 14, 22, 27, 34] y entre cruces de esquistosomas ShxSm que infectan a humanos en Senegal y Costa de Marfil [13, 19].

En Malí se han notificado casos de hibridación tanto en animales como en humanos. En animales, se notificaron casos de híbridos ScxSb en ganado procedente de mataderos en las ciudades de Mopti y Bamako [26]. En humanos, el único caso de híbrido entre Sh y Sb se informó en diez viajeros belgas que permanecieron en la meseta Dogon, una de las áreas endémicas más importantes para Sh [29]. El estado híbrido del parásito se infirió mediante la secuenciación genética de dos huevos recuperados en las heces de los pacientes. El gen nuclear ITS se asignó a las especies Sh, mientras que el gen mitocondrial Cox1 se asignó a las especies Sb [11].

El presente estudio propone el primer estudio epidemiológico hasta donde sabemos sobre la posible presencia de híbridos de esquistosomas del grupo S. haematobium en áreas hiperendémicas de Mali.

El estudio se realizó en noviembre de 2021 en dos aldeas endémicas Sh (Fangouné Bamanan y Diakalèl) en la región de Kayes, en el oeste de Malí. Estos dos pueblos están separados por 300 km. Fueron elegidos en función de su proximidad a las fuentes de agua (estanques en el distrito de Diéma, el río Senegal y sus afluentes en las proximidades de la ciudad de Kayes) (Fig. 1). La región de Kayes se caracteriza por un clima del norte de Sudán en el sur y un clima saheliano en el norte con dos estaciones principales: la temporada de lluvias (mayo-junio a octubre), marcada por una precipitación media anual de hasta 1.000 mm en el sur y 600 a 800 mm en el norte, y la estación seca, que se extiende de noviembre a abril-mayo [24]. La agricultura y la ganadería son las dos principales actividades económicas de la población [24]. De hecho, el clima sudano-saheliano de la región es favorable al cultivo de cereales secos (mijo, sorgo, maíz) y maní, y especialmente a la ganadería extensiva, donde conviven numerosos rebaños de vacas, ovejas y cabras.

Región de Kayes (Malí, África occidental) y ubicación de los dos sitios de estudio

Se recogieron muestras de orina de 393 niños (251 en Diakalèl y 142 en Fangouné Bamanan) de edades comprendidas entre 6 y 14 años. A cada niño se le asignó un número de identificación basado en las dos primeras letras del nombre de la aldea. Las muestras de orina se recogieron en frascos estériles de 60 ml entre las 9 am y las 2 pm. Luego de la homogeneización, se tomaron 10 ml de orina con una jeringa y se filtraron a través de un papel de filtro Whatman numerado (n.° de catálogo 1001–025, 25 mm) previamente colocado en un portafiltro. Luego, el filtro se tiñó con ninhidrina al 3%, se secó y se volvió a humedecer con agua del grifo antes de leerlo bajo un microscopio con un objetivo de 4X o 10X para detectar huevos de Sh. Los huevos se contaron y clasificaron según la recomendación de la OMS [36] como infección leve (1 a 49 huevos/10 ml) o grave (≥ 50 huevos/10 ml) [36]. Se utilizaron muestras de orina de 63 niños muy infectados para capturar miracidios en tarjetas FTA (GE Healthcare Life Sciences; Amersham, Reino Unido). Las muestras de orina se filtraron a través de un filtro de 40 µm (Fisherbrand™ Sterile Cell Strainers, EE. UU., lote 100082019) y luego se volvieron a lavar en un vidrio de reloj con agua de manantial. Después de 10 a 20 minutos de contacto con agua de manantial, los miracidios comenzaron a eclosionar. Los miracidios se recogieron individualmente utilizando una micropipeta P10 ajustada a un volumen de 3 µl y luego se capturaron en una tarjeta FTA. Las tarjetas FTA se almacenaron a temperatura ambiente en una bolsa ziplock protegida de la humedad hasta su uso para análisis molecular. Se capturaron un total de 30 a 35 miracidios por niño.

Se recuperaron discos de tres mm2 que contenían un solo miracidio de la tarjeta FTA utilizando un Craft Punch y se colocaron en tubos Eppendorf de 1,5 ml [2]. Luego, el ADN se extrajo utilizando un protocolo Chelex publicado previamente [4]. Se utilizó una RD-PCR (PCR múltiple de diagnóstico rápido) para genotipar el gen Cox1 del ADN mitocondrial (ADNmt) [35], y se utilizó ARMS (sistema de mutación refractaria a la amplificación-reacción en cadena de la polimerasa) para genotipar simultáneamente los genes nucleares ITS2 y 18S. [5]. La RD-PCR produce dos perfiles (Sh y Sb/Sc) según el tamaño de la banda (120 pb o 260 pb) en gel de agarosa. Tenga en cuenta que la RD-PCR no puede diferenciar entre Sb y Sc. ARMS-PCR produce perfiles más complejos (4 a 6 bandas) y permite discriminar Sc, Sb, Sh y todas las combinaciones híbridas. Los métodos de genotipificación RD-PCR y ARMS-PCR se verificaron dos veces mediante la secuenciación de 136 perfiles de parásitos. Las secuencias resultantes se ensamblaron y editaron manualmente utilizando Sequencher 4.5 (Gene Codes Corp.). Los polimorfismos de secuencia se verificaron y confirmaron visualizando los cromatogramas de las secuencias sin procesar y luego se alinearon con las secuencias de referencia utilizando el software MEGA. Luego, las secuencias se agruparon por especie y gen y se alinearon con secuencias publicadas previamente con números de acceso. Para el gen Cox1 (~ 1200 pb), las secuencias de referencia para Sh fueron JQ397330.1 de Senegal y AY157209.1 de Mali, Sb (AJ519521.1 de Senegal y MT159594.1 de Benin) y Sc) (MT579424.1 y MT579422.1 de Senegal Comparamos nuestras secuencias con las de Sh, Sb y Sc, ya publicadas en Genbank con los siguientes números de acceso respectivos: GU257398.1, MT580950.1 y MT580946.1 para ITS (~ 630) y Z11976. 1, AY157238.1 y AY157236.1 para 18S (~ 330). Los SNP específicos de cada especie nos permitieron diferenciarlos [5]. La combinación de la asignación de especies de los genes mitocondriales y nucleares da como resultado los siguientes genotipos posibles: Sb_SbxSb; Sh_ShxSh; Sc_ScxSc (considerado puro) y Sb_SbxSh; Sb_SbxSc; Sh_ShxSb; Sh_ShxSc; Sc_ScxSh y Sc_ScxSb (considerado híbrido).

Las proporciones genéticas se probaron mediante las pruebas de Chi-cuadrado o exacta de Fisher, según los datos. Los valores de probabilidad (P) <0,05 se consideraron estadísticamente significativos.

El proyecto fue revisado y aprobado por la Junta de Revisión Institucional (IRB) de la Facultad de Medicina, Farmacia y Odontología de la Universidad de Bamako (n° 2018/71/CE/FMPOS). Se obtuvo el consentimiento de la comunidad antes de que comenzara el estudio. Sólo se registraron y solicitaron muestras de orina a los niños cuyos padres o tutores y ellos mismos aceptaron participar en el estudio. Las personas que dieron positivo en la prueba de infección por esquistosomiasis fueron tratadas con prazicuantel (40 mg/kg de peso corporal) de acuerdo con las directrices del Programa Nacional de Control de la Esquistosomiasis (PNLSH).

Se examinaron un total de 393 muestras de orina para el diagnóstico de huevos de Sh (Tabla 1). La prevalencia global fue del 69,2% (272/393). La prevalencia y la intensidad de la infección fueron significativamente mayores en Diakalèl en comparación con Fangouné Bamanan (P <0,0001). Se utilizó orina de 63 niños muy positivos (48 en Diakalèl y 15 en Fangouné Bamanan) para recolectar y almacenar miracidios en tarjetas FTA.

Se genotiparon un total de 970 muestras, de las cuales solo 840 dieron resultados consistentes utilizando la RD-PCR (Tabla 2 y archivo adicional 1: Tabla S1). De estas 840 muestras, 353 (42,0%) mostraron un tamaño de banda Sb/Sc y 487 (58,0%) mostraron un tamaño de banda Sh. Se secuenciaron cincuenta y cinco muestras de 353 (alrededor del 15%) elegidas al azar (47 de Diakalèl y 8 de Fangouné Bamanan) con perfil Sb/Sc, y todas mostraron un perfil Sb. Se secuenciaron cuarenta muestras de 487 (8%) elegidas al azar (17 de Diakalèl y 23 de Fangouné Bamanan) con perfil Sh, y todas mostraron un perfil Sh. La distribución relativa de cada haplotipo fue diferente entre Diakalèl y Fangouné Bamanan con tres veces más haplotipo Sh en Fangouné Bamanan en comparación con Diakalel. De 970 muestras genotipadas, 925 dieron resultados consistentes utilizando la ARMS-PCR, de las cuales 885 (95,7%) mostraron un perfil ShxSh y 40 (4,3%) un perfil ShxSc (Tabla 2). Se secuenciaron veintiséis muestras de 885 (3%) elegidas al azar (7 de Diakalèl y 19 de Fangouné Bamanan) con perfil ShxSh, y todas mostraron un perfil ShxSh. Se secuenciaron quince muestras de 40 (37,5%) elegidas al azar (10 de Diakalèl y 5 de Fangouné Bamanan) con perfil ShxSc, y todas mostraron un perfil ShxSc.

Hubo una diferencia significativa en la distribución del perfil de Cox1 entre las dos aldeas (P <0,0001). La frecuencia de los alelos Sh ITS2/18S fue > 90% en ambas aldeas. La distribución de los genotipos ShxSh y ShxSc fue comparable entre las dos aldeas (P = 0,14) (Tabla 2). Se identificaron cuatro perfiles genéticos después de genotipificar miracidios usando Cox1 e ITS/18S: Sb/Sc cox1 × Sh ITS 2/Sc_18S (Sb/Sc_ShxSc); Sb/Sc_cox1 × Sh_ITS 2/ Sh _18S (Sb/Sc_ShxSh); Sh_cox1 × Sh_ITS2/Sc _18S (Sh_ShxSc); Sh_cox1 × Sh_ITS 2/Sh _18S (Sh_ShxSh). Tres perfiles híbridos [Sb/Sc_ShxSc (2,3%); Sb/Sc_ShxSh (40,5%); Se han descrito Sh_ShxSc (2,8%)] y un perfil genético puro [Sh_ShxSh (54,4%)]. Entre los tres perfiles híbridos, el perfil Sb/Sc_ShxSh estaba más representado en Diakalèl que en Fangouné Bamanan (68,0% frente a 4,7%). Por el contrario, el perfil genético Sh_ShxSh no híbrido fue más común en Fangouné Bamanan (88,9%) (Tabla 2: Archivo adicional 1: Tabla S1). En total se registraron el 45,6% (360/789) de los híbridos. La mayor prevalencia de híbridos se observó en Diakalèl con un 72,0%.

Realizamos un estudio parasitológico y molecular centrado en la recolección de orina de niños de una zona endémica de esquistosomiasis sometidos durante varios años a un tratamiento farmacológico masivo (MDT) con PZQ. Con una prevalencia promedio de S. haematobium del 69,2%, la tasa es más alta que la reportada recientemente en seis aldeas de la región de Kayes (50,1%) [1]. La prevalencia y la intensidad fueron significativamente mayores en Diakalèl en comparación con Fangouné Bamanan (P <0,0001). Esta diferencia entre los pueblos podría explicarse por el tipo de curso de agua: el río Senegal y sus afluentes en Diakalel son más frecuentados que los estanques en Fangouné Bamanan.

El análisis molecular permitió determinar los perfiles genéticos de un gen mitocondrial (Cox1) y dos nucleares (ITS2 y 18S). De los 840 miracidios genotipados, que dieron resultados consistentes utilizando la RD-PCR en ambas aldeas, (42,0%) y (58,0%) tenían perfiles Sb/Sc y Sh Cox1, respectivamente. La RD-PCR puede discriminar Sh y Sm pero no puede diferenciar Sb de Sc. Aunque el 15% de las secuencias seleccionadas al azar se identificaron como Sb independientemente del perfil nuclear, suponemos que en el muestreo general, la gran mayoría de Cox1 provino de Sb y no de Sc. El porcentaje de Sh (58,0%) que encontramos fue superior a los observados en Nigeria (11%) [22] y Costa de Marfil (49,3%) [2] pero inferior a los descritos en Senegal (79,0%) [7] y Camerún. (95,8%) [32]. Para los genes ITS2/18S, se identificaron dos perfiles: 95,7% para ShxSh y 4,3% para ShxSc. Este porcentaje de ShxSh es mayor que el observado en Nigeria (40,7%) [22] y Costa de Marfil (87,9%) [2], pero menor que el encontrado en Senegal (97,9%). [7] y Camerún (92,5%) [32]. Todos estos estudios demostraron que los alelos nucleares Sh son dominantes en parásitos recolectados de humanos.

El análisis de los perfiles genéticos de Cox1 e ITS2/18S se realizó en 789 miracidios, de los cuales 360 (45,6%) produjeron tres tipos de híbridos: Sb/Sc_ShxSc, Sb/Sc_ShxSh y Sh_ShxSc. Este porcentaje de híbridos es inferior al observado en Costa de Marfil (62,7%) [2] y Nigeria (89%) [22] pero superior al observado en Camerún (11,3%) [32]. Los híbridos con perfiles Sb/Sc_ShxSc indican flujo de genes entre las tres especies diferentes de esquistosomas. La observación del híbrido de tres especies (Sb_ShxSc) en nuestro estudio sugiere la posibilidad de interacciones y emparejamientos entre estas especies, como informó anteriormente [18] en Níger. Dichos resultados confirman el potencial de interacciones repetidas y emparejamientos cruzados entre estas tres especies y apoyan la hipótesis de que no son híbridos de primera generación sino más bien retrocruzamientos parentales y/o híbridos relativamente recientes [18]. El perfil de genotipo híbrido observado en nuestro estudio podría explicarse por el uso de los mismos puntos de agua por parte de poblaciones humanas y animales, especialmente en el Sahel, donde la escasez de agua es un fenómeno recurrente. Más allá de la hibridación entre Sb y Sh previamente demostrada por varios autores [2, 14, 22, 27, 29, 32], también observamos híbridos Sh_ShxSc en niños, lo que sugiere claramente que Sh puede hibridarse naturalmente con Sc, como también se ha demostrado en Senegal [34]. La ausencia de muestras de animales es la principal limitación de este estudio. El genotipado de miracidios de ganado o roedores podría proporcionar información sobre la transmisión zoonótica, como fue el caso en Benin con vacas [28] y roedores [27] y sólo en roedores en Senegal [9]. Nuestra investigación puede considerarse un estudio piloto que debe replicarse en todo el país para confirmar o no la frecuencia de las tres especies híbridas Sb_ShxSc.

Nuestros resultados mostraron, por primera vez hasta donde sabemos, una alta prevalencia de esquistosomas híbridos en infecciones humanas en la región de Kayes en Mali. La presencia de híbridos subraya la importancia del reservorio ganadero de esquistosomas, lo que dificulta el control y la eliminación de la esquistosomiasis. Se necesitan más estudios sobre la genética de poblaciones de esquistosomas en la interfaz humana y animal para evaluar el flujo genético del parásito y su impacto en la epidemiología de la enfermedad, la transmisión a humanos y el control de la enfermedad.

Todos los datos y materiales están disponibles en el artículo.

esquistosoma

hematobio

Curazao

bovis

Organización Mundial de la Salud

Administración masiva de medicamentos

encontrar el agente

Espaciador transcrito interno

Sistema de mutación refractaria de amplificación.

Catálogo

Ácido desoxirribonucleico

mitocondrial

Reverso interno

Delanteros internos

hacia atrás

Salir adelante

Desoxirribonucleico recombinante

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Agradecemos al Sr. Mamadou Traore, jefe de la aldea de Fangouné Bamanan, a todos los criadores, al Sr. Mamadou Sidibe, Director de la escuela Diakalel, a todos los escolares, a las autoridades escolares y sanitarias y a la población de Kayes por su apreciable contribución al éxito de la estudiar. Los autores agradecen principalmente a Amadou Dabo, llamado Boua, por sus incansables esfuerzos, el transporte del equipo y del material; el personal del MRTC (Centro de Investigación y Capacitación María); el personal de la Facultad de Medicina y Odontología y de la Facultad de Farmacia. Agradecemos al gobierno de Malí por la financiación y al Laboratorio IHPE, Universidad de Montpellier, CNRS, Ifremer, Universidad de Perpignan Via Domitia, Perpignan, Francia, por la bienvenida. Este trabajo contó con el apoyo financiero de ARES Trading SA, una filial de Merck KGaA, Darmstadt, Alemania. Este estudio se enmarca en el programa TULIP (ANR-10-LABX-41) de los “Laboratoires d'Excellence (LABEX)” y HySWARM (ANR-18-CE35-0001) de la Agencia Nacional de Investigación de Francia.

Este trabajo contó con el apoyo financiero de ARES Trading SA, una filial de Merck KGaA, Darmstadt, Alemania.

Departamento de Epidemiología de Enfermedades Infecciosas, Facultad de Farmacia, Centro de Investigación y Capacitación sobre la Malaria (MRTC), Universidad de Ciencias, Técnicas y Tecnologías de Bamako, Medio Ambiente, Salud, Sociedades (USTTB/UCAD/UGB/CNRST/CNRS), BP 1805, IRL 3189, Bamako, Malí

El fuego privado, Sidibe Bakary, Dembélé Laurent, Diakité Assitan, Ahristode Explosion, Guindo Hassim & Dabo Abdoulaye

IHPE, Universidad Montpellier, CNRS, Ifremer, Universidad Perpignan Via Domitia, Perpignan, Francia

Agniwo Privat, Boissier Jérôme, Doumbo Safiatou Niaré, Blin Manon y Dametto Sarah

Centro de Investigación para la Lucha contra las Enfermedades Infecciosas Tropicales (CReMIT/TIDRC), Universidad de Abomey-Calavi, Abomey-Calavi, Benin

Agniwo Privat & Ibikounlé Moudachirou

Instituto de Salud Global de Merck, Ares Trading SA, una filial de Merck KGaA, Darmstadt, Route de Crassier 1, 1262, Eysins, Suiza

Thomas Spangenberg

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Conceptualización: DA, DL, ST, BJ, AKP, IM, NSD. Preparación de materiales, recopilación y análisis de datos: AP, BM, DS, SB, DA, NSD, AA, GH, DA, BJ. Adquisición de financiación: DA, DL. CALLE. Investigación: DA, AKP, SB, DA, AAB. Metodología: DSN, BJ, DA, IM, AP, BM, DS. Administración del proyecto: DA. Supervisión: DA, BJ, NSD, IM. Validación: DA, DL. BJ, NSD, IM. Todos los autores leyeron y aprobaron el manuscrito final.

Correspondencia a Dabo Abdoulaye.

El protocolo del estudio fue aprobado por el Comité de Ética Institucional de la Facultad de Medicina y Odontología de Bamako con el número de referencia no. 2018/71/CE/FMPOS. Se informó a las autoridades escolares, docentes, padres/tutores y niños sobre los objetivos, procedimientos y posibles riesgos y beneficios del estudio. Se obtuvo el consentimiento informado por escrito de los padres o tutores legales de los niños, mientras que los niños dieron su consentimiento oral. Después del muestreo, se proporcionó un tratamiento con praziquantel siguiendo las pautas de la OMS (40 mg/kg) a los niños con infección por esquistosoma. A efectos de protección de datos, se asignó un número de identificación a cada participante.

Los directores de las escuelas Fangouné Bamanan y Diakalel obtuvieron el consentimiento informado de los padres de todos los escolares que participaron en el estudio. Disponibilidad del conjunto de datos: los datos de la secuencia se depositarán en la base de datos Cox 1 DNA del NCBI GenBank.

No aplica.

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses. Aprobación ética El permiso ético se obtuvo del Comité de Ética de la Faculté de Médecin et d'Odontostomatologie FMOS de Bamako, Mali. TS es empleado de Ares Trading SA, una filial de Merck KGaA, Darmstadt, Alemania.

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Tabla S1: Datos genéticos del parásito por niño y sitio centinela.

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Reimpresiones y permisos

Privat, A., Jérôme, B., Bakary, S. et al. Perfiles genéticos de los parásitos Schistosoma haematobium de áreas críticas de transmisión de Malí. Vectores de parásitos 16, 263 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05860-8

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Recibido: 21 de marzo de 2023

Aceptado: 30 de junio de 2023

Publicado: 04 de agosto de 2023

DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-023-05860-8

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